| Attribut | Einzelheiten |
|---|---|
| Katze | G1340 |
| Größe | 7 x 50 ml / 7 x 100 ml |
| Lagerung | RT, Vermeiden Sie Licht, gültig für 1 Jahr |
Kit-Komponenten
| Reagens | Volumen | Lagerung |
|---|---|---|
| Reagens (A): | ||
| Weigerts Eisen-Hämatoxylin-Lösung | 25ml (A1) / 50ml (A2) | RT, Vermeiden Sie Licht |
| Reagens (B): | ||
| Lösung zur Differenzierung von saurem Alkohol | 50ml | RT |
| Reagens (C): | ||
| Bläuungslösung | 50ml | RT |
| Reagens (D): | ||
| Ponceau-Säure-Fuchsin-Lösung | 50ml | RT, Vermeiden Sie Licht |
| Reagens (E): | ||
| Essigsäurelösung | 50ml | RT |
| Reagens (F): | ||
| Phosphomolybdänsäurelösung | 50ml | RT, Vermeiden Sie Licht |
| Reagens (G): | ||
| Anilinblau-Lösung | 50ml (F1) / 100ml (F2) | RT, Vermeiden Sie Licht |
Einführung
Das Masson Trichrome Stain Kit ist für die Untersuchung von Bindegewebe konzipiert, Muskel, und Kollagenfasern. Es hilft bei der Unterscheidung von Kollagen von glatter Muskulatur, die unter dem Mikroskop ähnlich aussehen können. Kerne werden mit Weigerts Eisenhämatoxylin gefärbt, Anschließend werden Zytoplasma und Muskel mit Beibrich-Scharlachsäure-Fuchsia gefärbt. Nach Behandlung mit Phosphorwolfram- und Phosphomolybdänsäure, Kollagen wird durch Anfärben mit Anilinblau nachgewiesen. Durch Spülen mit Essigsäure nach dem Färben werden die Farben zarter und transparenter. Dieses Kit eignet sich für den Einsatz auf formalinfixierten, in Paraffin eingebettet, oder Gefrierschnitte.
Protokolle (Nur als Referenz)
- Mit destilliertem Wasser entparaffinieren.
- Färben Sie mit Weigerts Eisen-Hämatoxylin-Lösung für 5-10 Protokoll.
- Differenzieren Sie mit Säure-Alkohol-Differenzierungslösung für 10-15 Sekunden.
- Blau in Bläulösung für 2-5 Protokoll. In entionisiertem Wasser spülen.
- Färben Sie mit Ponceau-Säure-Fuchsia-Lösung für 5-10 Protokoll. In entionisiertem Wasser spülen.
- Differenzieren Sie in Phosphomolybdänsäurelösung für 1-2 Minuten oder bis das Kollagen nicht mehr rot ist.
- Ohne Spülen, Fügen Sie dem Schnitt Anilinblaulösung hinzu und färben Sie ihn 1-2 Protokoll.
- Abschnitt in Essigsäure-Arbeitslösung legen (Mischen 1 Teil Essigsäurelösung und 2 Teile entionisiertes Wasser) für 1 Minute.
- Schnell trocknen lassen 95% Ethanol, absolutes Ethanol, und transparent in Xylol.
- Mit Resinen versiegeln.
Ergebnis
- Kern: Schwarz
- Zytoplasma, Muskelfasern: Rot
- Kollagen: Blau
Notiz
- Die Scheibenentparaffinierung sollte so sauber wie möglich erfolgen.
- Gleiche Mengen A1 und A2 werden gemischt, um eine Weigert-Eisen-Hämatoxylin-Färbelösung zu bilden, verliert im Allgemeinen seine Färbefähigkeit im Inneren 24 Std..
- Die Gewebefixierung spielt eine wichtige Rolle. Verschiedene Fixiermittel können die Färbezeit verlängern oder verkürzen.
- In klassischer trichromatischer Masson-Färbung, Für die Kernfärbung wurde Harris-Hämatoxylin verwendet, In dieser Färbelösung wird jedoch Weigert-Hämatoxylin verwendet, um leuchtendere Farben zu erzielen.
- Die Differenzierungszeit von saurem Ethanol sollte anhand der Scheibendicke bestimmt werden, Gewebetyp, und Alter.
- Eine schwache Säurelösung kann die Klarheit und Helligkeit der Farbe verbessern.
- Die Differenzierung der Phosphomolybdänsäure sollte unter dem Mikroskop kontrolliert werden, bis die Kollagenfasern hellrot sind.
- Die Masson-Bläulösung kann durch die Scott-Bläulösung oder ersetzt werden 0.1-1% Lithiumcarbonatlösung.
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